主笔:于浩、刘新雨
注意事项
1、如果有大量样本要提取,或者对于基因组质量要求较高,就选用CTAB方法提取,基因组完整度高,成本低。
2、如果不超过5个样本,选用真菌基因组提取试剂盒进行提取就可以了。
3、CTAB法使用冻干的样本,新鲜样本提取效果不好
一、实验准备
1、实验材料
CTAB方法使用冻干的组织或者菌丝,将新鲜子实体切成2 ~3 mm的小块(菌丝直接刮取就可以),放到-80摄氏度冷冻,并进行冷冻真空干燥。冻干之后的样本可以在-20℃长期保存。
2、试剂
CTAB抽提液:见《常见溶液、缓冲液配制方法》
DNA提取酚试剂、氯仿/异戊醇混合溶液:公共冰箱4℃,用完放回
Ribonuclease A (RNase A):公共冰箱-20,用完放回
异丙醇、70%乙醇(配置方法见《常见溶液、缓冲液配制方法》)
TE缓冲液:用胶回收试剂盒中现成的最后一步洗脱用的的Elution Buffer。
二、实验步骤
2.1 样本研磨(~20 min)
1、样品研磨
将-20℃冻存的新鲜子实体样本和冻干的样本中加入3粒3 mm钢珠,在组织研磨仪上60 Hz 90s,取出来观察一下是否研磨成功,如果研磨的不好,再次研磨90 s【一般两次就没有问题了】
2.2 CTAB抽提Genomic DNA(~1 h)
2、加入2.0 mL CTAB抽提液,65 ℃金属浴保温45 min以上,每隔10 min轻摇混匀,尽量使菌丝裂解完全;
(有文献报道这里可以添加1%的PVP,需要优化可以尝试)
3、12000 rpm,离心10 min,将0.9 mL上清转移到新的2 mL的离心管中,一共装2管;
2.3 去除蛋白(~1 h)
4、取0.9 mL上清液加入等体积的DNA提取酚试剂(在公共冰箱4度),**轻轻混匀**10 min(可以在脱色摇床上面低转速混匀),12000 rpm,4 ℃离心10 min;
(有文献报道这里可以增加一步乙酸钾来除蛋白,本方案没有这一步)
5、取0.8 mL上清液(上层)移入新离心管中,加入等体积的氯仿异戊醇混合溶液(在公共冰箱4度),轻轻混匀10 min(可以在脱色摇床上面低转速混匀),12000 rpm,4 ℃离心 10 min;
2.4 DNA沉淀(~2 h)
6、取0.6 mL上清(上层)液移入新离心管中,加入2/3体积的4℃预冷的异丙醇,置于-20 ℃冰箱沉淀20 min以上(根据自己的时间灵活掌握,这个时间可以延长,也可以过夜沉淀),8000 rpm,4℃离心10 min;
7、弃去上清液,沉淀用70%乙醇,上下颠倒洗涤1次,12000 rpm,室温离心3 min,去上清;
8、将离心管倒置放在吸水纸上面吸干残余液体,将DNA自然晾干直至白色DNA沉淀刚刚完全变透明;
9、加入80 μL TE buffer(用试剂盒里面的就行),轻轻敲打使沉淀溶解;
10、加入0.3 μL RNaseA(公共冰箱-20℃),37 ℃水浴,保温1 h,去除RNA;
11、Genomic DNA进行agarose电泳检测拍照,保存照片,做好标记后,于-20℃冰箱贮藏备用。
实验记录
样本名称 | 样本信息 | NanoDrop测定浓度和agarose电泳图 |
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Sample1 | **g,样本来源,样本类型(子实体,子实体冻干,菌丝,菌丝冻干等) | |
Sample2 | ||
Sample3 |
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